兔嗅球神经元细胞分离自嗅球组织；嗅球是脊椎动物前脑结构中参与嗅觉的部分，用于感知气味。嗅球分为二个不同的结构：主嗅球及辅助嗅球。在大脑额叶来自许多嗅细胞的神经纤维缠集在一起，形成线球状的部分。在这里，纤维与多个次级神经元——僧帽细胞的树突相连接，进而由这里伸出神经纤维形成嗅囊，终止于额叶下方。一般认为它在嗅味的辨别中具有重要的功能。对于大部份的脊椎动物而言，嗅球位在大脑的最前面，不过人的嗅球位于大脑的内部。嗅球由筛骨的筛板固定且保护嗅球，哺乳动物的筛板会分隔嗅球和嗅上皮，而嗅神经会穿过筛板中的筛孔而连接到嗅球。嗅球分为二个不同的结构：主嗅球及辅助嗅球。
产品属性
产品名称 兔嗅球神经元细胞
组织来源 嗅球组织
默认种属 新西兰大白兔，其他咨询
产品规格 5×10^5Cells/T25
包被条件： PLL（0.1 mg/mL）
培养基： 兔嗅球神经元细胞完全培养基(基础培养基，含B-27 Supplement、Penicillin、Streptomycin等)
换液频率： 每2-3天换液一次
生长特性： 贴壁
细胞形态： 神经元细胞样
传代比例： 不传代
传代特性： 属于终末分化细胞；属于不增殖细胞群
消化液： 0.125%胰蛋白酶
兔嗅球神经元细胞体外培养周期有限；建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养，以此保证该细胞的最佳培养状态。
质量检测
实验室分离的兔嗅球神经元细胞经β-Tubulin-Ⅲ免疫荧光鉴定，纯度可达90%以上，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。
方法简介
实验室分离的兔嗅球神经元细胞采用胰蛋白酶消化法、神经元专用培养基培养筛选结合化学试剂抑制法制备而来，细胞总量约为5×10⁵ cells/瓶。
操作步骤
步骤一：嗅球组织无菌低温取材 无菌低温环境下快速摘取兔脑部新鲜嗅球组织，立即放入预冷无菌基础培养基中，轻柔冲洗表面血迹与杂质，精准剔除脑膜、血管及无关脑组织，保留纯净嗅球神经组织，修剪为细小组织碎块，全程低温操作防止神经元凋亡。
步骤二：温和酶解解离神经细胞 加入预热的0.2%胰蛋白酶消化液，完全浸没嗅球组织碎块，37℃水浴避光消化9分钟，每隔3分钟轻柔摇晃一次，温和解离神经元细胞，避免过度消化损伤神经突触结构。
步骤三：终止消化与过滤收集 消化达标后立即加入含血清神经元专用培养基终止消化，轻柔缓慢吹打混合液，使神经元细胞充分分散，过滤去除组织残渣，收集纯净嗅球神经元细胞悬液。
步骤四：离心洗涤纯化细胞 1000rpm低速离心5分钟，弃上清去除消化液与杂质，保留细胞沉淀。无菌PBS轻柔重悬洗涤2次，彻底清除残留污染物，保护脆弱神经元活性。
步骤五：低密度计数与浓度校准 专用培养基重悬细胞制备单细胞悬液，台盼蓝染色计数活细胞，根据嗅球神经元低密度生长特性，将细胞浓度精准调整至4×10⁵个/mL，保障突触正常分化生长。
步骤六：包被培养板接种铺板 将细胞悬液接种至多聚赖氨酸包被的无菌培养板中，轻轻晃动均匀铺板，为神经元贴壁、突触伸展提供良好基质环境，标注实验信息。
步骤七：避光静置分化培养 放入37℃、5%CO₂饱和湿度培养箱避光静置培养48小时，全程禁止晃动。48小时后首次半量换液，后续每3天半量换液，每日观察神经元形态、突触延伸与网络形成状态。
