大鼠脑膜细胞分离自脑膜组织；脑膜是颅骨与脑间的隔膜，一共有三层，由外向内为硬脑膜、蛛网膜和软脑膜。硬脑膜，是一厚而坚韧的双层膜，外层是颅骨内面的骨膜，仅疏松地附于颅盖，特别是在枕部与颞部附着更疏松，称为骨膜层。蛛网膜是一层半透明的膜，位于硬脑膜深部，其间有潜在性腔隙为硬脑膜下隙。软脑膜是紧贴于脑表面的一层透明薄膜，并伸入沟裂。在脑室壁的某些部位，软脑膜及其血管与室管膜上皮共同形成脉络组织。脉络组织中的血管反复分支成丛，突入脑室形成脉络丛。脑膜细胞围绕着大脑，参与中枢神经系统的正常发育，能稳定脑软膜表面的细胞外基质、组织放射状胶质细胞网络和小脑皮层分层结构。
产品属性
产品名称 大鼠脑膜成纤维细胞
组织来源 脑膜组织
默认种属 SD大鼠，其他咨询
产品规格 5×10^5Cells/T25
培养基： 大鼠脑膜成纤维细胞完全培养基(含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等)
换液频率： 每2-3天换液一次
生长特性： 贴壁
细胞形态： 成纤维细胞样
传代比例： 1:2
传代特性： 可传3代左右；1-2代以内状态最佳
消化液： 0.25%胰蛋白酶
大鼠脑膜成纤维细胞体外培养周期有限；建议使用配套的专用生长培养基及正确的操作方法来培养，以此保证该细胞的最佳培养状态。
质量检测
实验室分离的大鼠脑膜成纤维细胞经Vimentin免疫荧光鉴定，纯度可达90%以上，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。
方法简介
实验室分离的大鼠脑膜成纤维细胞采用胰蛋白酶-胶原酶混合酶消化后差速贴壁制备而来，细胞总量约为5×10⁵ cells/瓶。
操作步骤
一、实验前准备
解剖器械、培养皿、离心管、细胞筛
试剂：PBS、DMEM 完全培养基、0.25% 胰酶、双抗
二、取材与预处理
剪开大鼠颅骨，小心剥离大脑表面硬脑膜、软脑膜完整膜组织。
PBS 漂洗脑膜组织，去除粘连脑组织与血凝块，剪碎脑膜。
三、细胞分离与消化
胰酶 37℃消化 20min，吹打解离组织块。
培养基终止消化，滤网过滤杂质，离心收集细胞。
PBS 洗涤沉淀两次，去除消化液。
四、纯化与接种培养
完全培养基重悬接种培养瓶，差速贴壁纯化成纤维细胞。
48h 换液，去除未贴壁神经类杂细胞。
细胞铺满瓶底即可常规传代培养。
